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生物透射电镜(生物TEM)

498次预约 100%满意度 10天完成

生物透射电镜(生物TEM)须知:

1. 样品要求:生物样品;

2. 特别注意:是否需要包埋、切片或者负染;形貌拍摄由于其特殊性,老师会尽力拍摄,但无法保证一定会拍到您预期效果的图片,敬请理解!

3. 如有其他疑问,请联系前期对接的技术顾问;


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常见问题

  • 生物样品透射电镜取材注意事项

    取材是电镜实验的第一步,其操作成功与否直接关系到电镜结果的效果及成败。 为了得到好的结果,请务必按要求做好取材!取材基本要点:快(1min)、冷(4 ℃)、小(1 mm 3)、净(无杂质)、准(部位准确)。不同的样品,取材细节上有很大区别!

     一、动物组织取材流程及要求

    取材流程:动物麻醉或断头急性处死,解剖取出所需的器官或组1.jpg生理盐水简单冲洗血液及组织液。按要求将组织切1mm³块,固定于组织及细胞电镜专用2.5%戊二醛固定液。

    取材要求:

    1、 位置:肝、肺、脾等无需定位组织取1mm³组织,3-5块;需要定位组织如骨骼肌、肾、肠、血管、胰岛等组织取材大0.5mm×1mm×3mm左右的长条状,且保证观察结构在组织块中。

    2、 操作:试剂、容器、器械提前4℃预冷;组织离体后,1min浸入戊二醛固定液。取材时,可提前准备一个载玻片(硬卡纸),滴几滴戊二醛固定液,把标本浸在液滴中修整至合适大小(时间稍长),用牙签挑出 35 粒标本,放1.5mL尖头EP管。将修整的标本块放入戊二醛固定液后,普通 4℃冰箱保存。

    二、细胞取材流程及要求

    取材流程:细胞直接刮下(不可胰酶消化 会造成细胞损伤),细胞悬液离2.png心,弃上清,PBS 2次(敏感的细胞直接固定,不洗),低速(1000-3000rpm)离心成团,加入组织及细胞电镜专用2.5%戊二醛固定液 4℃过夜后快递。悬浮细胞、菌液可直接视为细胞悬浮液操作。固体培养基培养的菌可直接将菌落挑到PBS中,后续操作一致。

    取材要求:

    1、细胞数量充足(6cm10cm皿长满),离心后在EP管中绿豆大小

    2、缓冲液、戊二醛固定液等PH7.3-7.44℃提前预冷;

    3、贴壁细胞连着培养基用细胞刮斜着快速刮下,不要反复来回刮;

    4、细胞悬液转入离心管,1000-3000rpm离心成团,弃上清,加PBS,将细胞转入1.5ml尖头EP管,再次离心后弃上清。再加PBS重复上述步骤,最后加2.5%戊二醛固定,4℃保存。操作轻柔,尽量保证细胞不散开。(转速及时间请结合细胞情况,尽量低转速、短时间,以细胞离心成团为准!(PBS 清洗时间过长,易造成细胞损伤) 

    三、植物组织取材及要求3.jpg

    取材流程:PBS冲洗样品,确保无泥沙等污染物。然后用锋利刀片或剪刀将样品切成合适大小,装入预冷的植物及细菌电镜专用2.5%戊二醛中。不需要定位的样品切成1立方毫米大小(如叶片、果实、花粉等),需要定位的样品,切成0.5mm×1mm×3mm的长条状(茎、根、表皮等)随后抽气,让组织能沉淀到管底。(简易抽气方法:将植物组织同固定液一起倒入注射器,用乳胶手套食指堵住注射器出口,右手拉动针栓,将注射器口垂直向上,松开食指,右手轻推针栓使液面上的气泡从注射器口排出,反复多 次,直至组织沉入固定液。)

     四、其他样品

    悬浮细胞、细菌可视为细胞悬液操作。固体培养的细菌,可视为被切小的组织块,直接用牙签挑取3-5个菌落即可。外泌体、纳米材料、脂质体、病毒颗粒等负染样品,根据样品特点,固定或不固定后合适条件运输。具体可咨询工作人员。

    五、样本储存运输标准:

    储存:样本取材后,4℃保存时间不超过1个月。

    运输:固定液充满EP管,封口膜封口,气泡膜或报纸包裹厚一些。最后泡沫盒+冰袋的方式运输,冰袋2-3个(-20℃冰袋,不要太多),一定要与样品隔开。特殊样品如脂肪、植物等用纱布将样品压到液面以下,保证充分固定。(见下图)   

      

                            


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